Быстрая латексная агглютинация - Wellcolex™ Color Salmonella Rapid Latex Agglutination Test Kit 50 тестов

Для выполнения Wellcolex Color Salmonella нанесите образец из бульонной культуры селенита F (инкубация от 18 до 24 часов) или суспензию бактерий из твердого агара и затем добавьте смесь суспензий красных, синих и зелёных латексных частиц, каждое из которых покрыто антителами, специфичными для разных серогрупп сальмонелл.

В присутствии гомологичного антигена один из цветов в смеси будет агглютинировать, и на идентичность антигена указывает цвет агрегированных частиц с контрастным изменением цвета фона.

Каждую комбинацию легко отличить от других и от отрицательного результата, при котором частицы остаются в гладкой серо-коричневой суспензии, и от случайного неспецифического результата, при котором все частицы агглютинируют в серо-коричневые агрегаты на чистом фоне.

Приготовление

Этот продукт готов к использованию, дополнительная подготовка не требуется.

Методика

А. Метод анализа бульонов

1. Ресуспендируйте латексные частицы 1 и 2, энергично встряхивая в течение нескольких секунд. Держите флаконы вертикально и капните по одной свободно падающей капле каждого латексного реагента в отдельный кружок на плоской карточке реакции. Лопните пузырьки воздуха концом пробоотборной палочки.
2. С помощью одноразового дозатора образцов, удерживаемого вертикально, перенесите по одной свободно падающей капле (40 мкл) инокулированного бульона селенита F в каждый из двух кружков, убедитесь, что бульон не встряхивается, когда они извлекаются из термостата. Важно, чтобы проба бульона бралась непосредственно над фекальными остатками, чтобы не брать остатки вместе с пробой. Следите за тем, чтобы не образовывались пузырьки воздуха. Выбросьте диспенсер для безопасной утилизации.
3. Используя палочку для отбора проб, перемешайте содержимое каждого круга и распределите его по всей площади круга. Для обоих кругов можно использовать одну и ту же палочку, а затем выбросить её для безопасной утилизации.
4. Поместите карту в подходящий шейкер с плоской платформой со скоростью 150 ± 5 об / мин в течение 2 минут. Выключите и наблюдайте за агглютинацией, не вынимая карту из шейкера. Карту следует смотреть прямо сверху на нормальном расстоянии для чтения (от 25 до 35 см). Не используйте увеличительную линзу. Полученные рисунки чётко очерчены и легко распознаются при любых условиях нормального освещения.
5. Если есть какие-либо сомнения относительно того, произошла ли агглютинация, тест следует повторить, используя 40 мкл капли отрицательного бульона. Не должно быть видимой агглютинации. Этот результат следует использовать как основу для сравнения.
6. Выбросьте использованные реакционные круги для безопасной утилизации. Убедитесь, что латексные реагенты возвращены в холодильник (от 2 до 8 °C).

Идентификация колоний

1. Внесите примерно 200 мкл физиологического раствора в пробирку для суспензии. Можно использовать одноразовый дозатор образцов с градуировкой примерно 200 мкл.
2. Из суточной культуры, возьмите одну или две колонии среднего размера (от 1 до 2 мм) с подозрением на сальмонеллу из чашки для культивирования, используя плоский конец палочки для отбора проб, и тщательно эмульгируйте бактерии в физиологическом растворе. С небольшими колониями нужно будет собрать больше; конец палочки для отбора проб должен быть закрыт. Выбросьте палочку для отбора проб для безопасной утилизации.
3. Ресуспендируйте латексные реагенты 1 и 2, энергично встряхивая в течение нескольких секунд. Держите флакон вертикально и капните по одной свободно падающей капле каждого латексного реагента в отдельный кружок на плоской карточке реакции. Лопните пузырьки воздуха концом пробоотборной палочки.
4. С помощью одноразового дозатора образцов, удерживаемого вертикально, перенесите по одной свободно падающей капле (40 мкл) бактериальной суспензии в каждый из двух кружков. Следите за тем, чтобы не образовывались пузырьки воздуха. Выбросьте диспенсер для безопасной утилизации.
5. Используя палочку для отбора проб, перемешайте содержимое каждого круга и распределите его по всей площади круга. Для обоих кругов можно использовать одну и ту же палочку, а затем выбросить ее для безопасной утилизации.
6. Поместите карту в подходящий шейкер с плоской платформой со скоростью 150 ± 5 об / мин в течение 2 минут. Выключите и наблюдайте за агглютинацией, не вынимая карту из ротатора. Карту следует смотреть прямо сверху на нормальном расстоянии для чтения (от 25 до 35 см). Не используйте увеличительную линзу. Полученные рисунки чётко очерчены и легко распознаются при любых условиях нормального освещения. Если есть какие-либо сомнения относительно того, произошла ли агглютинация, тест следует повторить, добавив 40 мкл физиологического раствора. Не должно быть видимой агглютинации. Этот результат следует использовать как основу для сравнения.
7. Выбросьте использованные реакционные круги для безопасной утилизации. Убедитесь, что латексные реагенты возвращены в холодильник (от 2 до 8 °C).

Условия хранения и сроки годности

Если не указано иное, все компоненты следует хранить при температуре от 2 до 8 °C, при этом они сохранят активность до истечения срока годности набора.

Открытые реакционные карты следует хранить при комнатной температуре (от 18 до 30 °C).

Состав набора:

1. Латексный реагент (белая крышка)
2. Латексный реагент (белая крышка)
3. Красный положительный контроль (красная крышка)
4. Синий положительный контроль (синяя крышка)
5. Зелёный положительный контроль (зелёная крышка)
6. Одноразовые палочки для смешивания
7. Одноразовые реакции
8. Одноразовые образцы
9. Диспенсеры
10. Одноразовая суспензия
11. Трубки
12. Инструкция по эксплуатации
13. Методика